一、化学诱导糖尿病模型的区分
1型糖尿病与2型糖尿病动物模型造模与STZ注射的剂量有关系。STZ大剂量注射时,由于直接引起胰岛β细胞的广泛破坏,可造成1型糖尿病模型;而注射较少量STZ时,由于只是破坏一部分胰岛β细胞的功能,造成外周组织对胰岛素不敏感,同时给予高热量饲料喂养,两者结合便诱导出病理、生理改变都接近于人类2型糖尿病的动物模型。
1型糖尿病模型成模比较快,通常在普通饲料适应性喂养2周后即可开始造模。2型糖尿病模型通过高脂饮食诱发出胰岛素抵抗加相对小剂量STZ进行造模。
二、化学诱导剂的选择
链脲霉素(Streptozotocin,streptozocin,STZ,又叫链唑霉素)和四氧嘧啶(alloxan,ALX)是造2型糖尿病动物模型常用的两种辅助工具药物,其中又以STZ诱导最常用。链脲佐菌素 ( streptozotocin,STZ) 是一种药效强大的烷基化剂,能干扰葡萄糖的转运,影响葡萄糖激酶的功能,诱导 DNA 双链的断裂。目前认为,STZ 抑制体内胰岛素水平是通过引起特殊位点的烷基化,进一步导致多聚 ADP-核糖体激活,从而引起胞内 NAD+和 ATP 消耗,最终导致大量反应性氧簇产生。因此,利用 STZ 诱导建立 2 型糖尿病模型十分常见。
四氧嘧啶( alloxan,ALX) 是胰岛β细胞毒剂,可通过氧化-SH基团,抑制葡萄糖激酶,产生自由基,干扰细胞内钙稳态,选择性损伤胰岛β细胞,导致胰岛素缺乏、高血糖,常用于1型糖尿病模型制备。但近年来出现了不少以小剂量四氧嘧啶直接诱导建立 2 型糖尿病动物模型的实验研究。
STZ和ALX的比较
名称 | 优点 | 缺点 |
STZ,链脲霉素,链唑霉素。 | STZ的毒性低,稳定性好,半衰期长(15min)。 | 兔胰岛β细胞对STZ不敏感 |
ALX,四氧嘧啶 | ALX模型建立快,成模后动物血糖浓度较高且稳定,价格低廉。 | ALX毒性大,对造模动物体重等指标存在影响,半衰期很短(1分钟),溶液稳定性差,对PH值要求严苛。动物死亡率高。 |
三、鼠的选择
国内外研究显示关于T2DM动物模型的建立方法,常用的大鼠品系是SD大鼠或Wistar大鼠等。Wistar大鼠成模率低于SD大鼠且死亡率均高于SD大鼠;Wister大鼠空腹成模率为62.5%,SD鼠为87.5%,非空腹组成模率仅为10%。
雄性大鼠比雌性大鼠成模率高,稳定性好,耗时短。单纯高脂高糖饮食喂养的雄性、雌性大鼠,血糖血脂无差异,但注射STZ后,雌性鼠对STZ敏感性弱于雄性鼠,雄性大鼠血糖升高并稳定在较高水平,而雌性需要再一次注射STZ,模型才能相对稳定。为保持SD大鼠良好的营养状态及较强的抵抗力,造模前大鼠体重应>200 g。
四、STZ的使用
4.1 STZ的配制
注射STZ 建立T2DM 模型是较为关键的环节。STZ性质不稳定,极易挥发,需现配现用,配置STZ溶液前配好0.1 mol/L柠檬酸缓冲液(pH=4.4),临用时取称适量STZ粉末,溶于新配置的1% 柠檬酸缓冲液中。STZ 须保存于-20℃冰箱,避光保存,10 min左右用完。柠檬酸缓冲液必须过滤。柠檬酸/柠檬酸钠为普通的化学试剂,内有杂质影响动物对STZ的吸收。特别是直接静脉注射,严格要求过滤。
4.2 STZ的注射
目前STZ给药途径主要有尾静脉和腹腔注射两种。据相关报道,尾静脉注射所需剂量比腹腔注射要低,但是尾静脉注射操作技术要求较高,故多使用腹腔注射法。腹腔注射时,为避免感染,应确保每只大鼠单独使用一个注射器和针头。腹腔注射时应尽量保持大鼠头朝下,腹腔尽可能朝上,使大鼠内脏在重力作用下移向上腹部,尽可能避免注射进其他脏器。另外,在注射STZ 时,为了防止注射入皮下,还要注意选择合适的注射部位。
4.3 STZ的剂量
动物的均重(注射时)不同,剂量的选取不同,STZ单位剂量选取上体重成反比关系。参考值如下表:
二型糖尿病模型经腹腔注射一次给药计量表
克重 | 计量 |
220-250克大鼠 | STZ 剂量通常在35~50mg/Kg |
180-200克大鼠 | STZ 剂量通常在55~40mg/Kg |
25-35克小鼠 | STZ 剂量在65-100mg/Kg |
STZ剂量直接决定成模的效果,本文仅给出一些参考范围,具体剂量的选取,通过预实验的结果来最终确定。以上数据仅能得出不同重量动物在STZ单位给药量上的关系,即体重越大的动物,单位剂量要适当减少;当然体重大的动物总的STZ耗量仍是高于体重小的。
4.4 STZ的注射频次
一次大剂量注射STZ可引起胰岛β 细胞的广泛破坏,建立的大多是T1DM模型;而在建立T2DM 模型时,高脂高糖饲料喂养使其产生胰岛素抵抗,再多次小剂量注射STZ,使部分β 细胞受损、外周胰岛素抵抗。STZ注射后,药力发挥主要集中在注射后的3-72小时,特别是在前24小时。所以如果采用分次注射,希望在2-72小时内延续第二次注射,目前大部分使用者以24小时为周期居多。次数:从1~7次都用人选用过。根据使用这情况大致排序:1次、3次、2次、5次、7次。
五、其他影响因素
高糖、高脂饲养SD大鼠的时间:高糖、高脂饲养的时间越长,动物体重越重,胰岛素抵抗越明显,胰岛负担越重,其所需的STZ每kg体重剂量减少,但总STZ剂量增多[30]。SD大鼠予高糖、高脂饲养时间越长,动物越肥胖,造成糖尿病模型后期并发症越多,故建议高脂、高糖饲养时间8 周为宜。
SD大鼠空腹时间:空腹时间越长,机体对STZ越敏感,所需STZ的剂量越少[31],但空腹时间过长,易引发低血糖,从而导致动物死亡率升高,因此,建议空腹时间12 h为宜。造模成功后大鼠多尿症状明显,故应勤换垫料,保持鼠笼清洁、干爽,防止感染。
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